从面膜、护肤品、健身、瑜伽，再到早C晚A可以见得当下人们对于健康状态的追求。也因此，出现了很多新潮的保养方式，推动了口服美容产业的蓬勃发展。五个女博士一直致力于科技研发，以创新科技为消费者带来更优质的产品。本文通过罗非鱼鱼皮胶原蛋白的研究，解读口服美容市场中这一重要成分的核心竞争力。
自然衰老几乎存在所有生物体中，是一个极其复杂的过程[1]，随着衰老程度的增加，会产生过多的活性氧（ROS），过多的ROS会引起存在于生物膜上的多不饱和脂肪酸氧化，并且形成一系列脂质过氧化产物丙二醛（MDA），从而引起细胞损伤[2]，导致衰老。因此，有关抗氧化和抗衰老的研究也成为了热点研究课题[3]。
近期研究表明，鱼类具有易得到、污染少、疾病传播的风险小、胶原蛋白产量高等特点，因而成为胶原蛋白的较好来源[4,5]。在鱼类加工过程中，鱼皮等副产物含有丰富的鱼类胶原蛋白，胶原蛋白中含有疏水性的氨基酸[6,7]，可以增加胶原蛋白肽在油脂中的溶解度，进而提高抗氧化活性。
胶原蛋白肽是胶原蛋白经过一系列水解以后得到的产物，具备抗氧化作用，可作为天然抗氧化剂[8,9]。抗氧化剂分为酶抗氧化剂和非酶抗氧化剂，在酶抗氧化剂中，SOD、CAT和GSH-Px等酶起着主要作用[10]。周先艳等[11]对罗非鱼鱼皮胶原蛋白水解产物（TSGH）分离得到3个肽组分（TSGH-1、TSGH-2和TSGH-3），并对TSGH-3的抗氧化活性进行评价。
试验方法1
由图可知，TSGH-3的·OH清除率随其质量浓度的增加而增大，在质量浓度为800μg/mL时，TSGH-3和GSH的清除活性均达到最大，分别为74.8%和82.2%。
由图可知，不同质量浓度的TSGH-3的ABTS＋·清除能力，TSGH-3的活性低于Trolox（水溶性维生素E），其清除活性随样品质量浓度的增加而增大，成线性相关。
由图可知，随着样品质量浓度的增加，Fe2＋螯合能力增大，说明TSGH-3具有Fe2＋螯合能力。在该研究中，通过3种方法评价了TSGH-3的抗氧化性，包括·OH、ABTS＋·以及Fe2＋螯合能力，结果表明TSGH-3具有很好的清除自由基和金属螯合活性。
试验方法2
试验选了50只小鼠，将其分为5组，每组10只：对照组（CG）、D-半乳糖模型组（DG）、TSGH-3高剂量组（HG）、TSGH-3中剂量组（MG）和TSGH-3低剂量组（LG）。向DG、HG、MG和LG组的大鼠经腹腔注射1000mg/（kg·d）的D-半乳糖，对照组腹腔注射相同体积的生理盐水（0.9%）。
在评价机体抗氧化能力时，T-AOC是一种很重要的指标。由图可知，不同组织中DG的T-AOC显著低于CG组，结果表明D-乳糖会破坏机体的抗氧化系统，加速衰老进程，但随着TSGH-3质量浓度的增加，T-AOC活力增加，显著增加了小鼠的抗氧化能力。
由图可知，TSGH-3能减少MDA含量，并且随着TSGH-3质量浓度的增加，MDA含量会降低。说明TSGH-3可能因其自由基清除活性和金属螯合能力，而具有抑制体内脂质过氧化物的能力。
由图可知，随着TSGH-3质量浓度的增加，可以有效地保护大鼠中SOD的活性，说明TSGH-3能明显阻止由D-半乳糖诱导的超氧自由基对机体的损伤。
由图可知，DG组中的血清、肝脏和肾脏组织的GSH-Px活性显著低于CG组，LG、MG和HG组的抗氧化活性均高于DG组。说明TSGH-3对D-半乳糖诱导的衰老大鼠中GSH-Px活性的再生有一定的影响。在该研究中，TSGH-3能增大血清、肝脏和肾脏的SOD和GSH-Px活性，减少MDA含量，保护体内抗氧化防御系统，从而抑制器官老化。
结论
研究表明，TSGH-3具有较高的体外抗氧化活性，并且在大鼠体内能抑制由D-半乳糖诱导的衰老。因此，罗非鱼鱼皮胶原蛋白水解产物TSGH-3对人体衰老的预防有一定的作用。
从结论不难看出，相比陆生动物，水生生物胶原蛋白肽受污染小，疾病和抗生素影响小，所以鱼类副产物是目前认为比较安全、比较好的胶原蛋白肽原料来源，而五个女博士正是将这一重要成分利用到产品中，获得了广大消费者的认可。
参考文献
[1] KAWAKAMI K, KADOTA J, IIDA K, et al. Reduced immune function and malnutrition in the elderly[J]. Tohoku Journal of Experimental Medicine,1999, 187(2): 157-171.
[2] HOU H, LI B F, ZHAO X, et al. The effect of pacific cod (Gadus macrocephalus) skin gelatin polypeptides on UV radiation induced skin photoaging in ICR mice[J].Food Chemistry, 2009, 115(3): 945-950.
[3] KARIM A A, BHAT R. Fish gelatin: properties, challenges, and prospects as an alternative to mammalian gelatins[J]. Food Hydrocolloids, 2009, 23(3): 563-576.
[4] LI H, LIU B L, GAO L Z, et al. Studies on bullfrog skin collagen[J]. Food Chemistry, 2004, 84(1): 65-69.
[5] SADOWSKA M, KOŁODZIEJSKA I, NIECIKOWSKA C. Isolation of collagen from the skins of Baltic cod (Gadus morhua)[J]. Food Chemistry, 2003, 81(2):257-262.
[6] M C Gómez-Guillén,B Giménez,M E López-Caballero,et al. Functional and bioactive properties of collagen and gelatin from alternative sources：a review[J]. Food Hydrocolloids, 2011,25(8): 1813-1827
[7] M Chalamaiah,B Dinesh Kumar,R Hemalatha,et al. Fish protein hydrolysates：proximate composition,amino acid composition,antioxidant activities and applications：a review[J]. Food Chemistry, 2012, 135(4): 3020-3038
[8] 陈日春, 熊文飞, 蔡一楠,等.鲢鱼鱼鳞胶原蛋白肽抗氧化作用研究[J]. 食品科学技术学报, 2013,31(6): 28-31
[9] Di Bernardini R,Harnedy P, Bolton D, et al. Antioxidant and antimicrobial peptidic hydrolysates from muscle protein sources and byproducts[J]. Food Chemistry, 2011, 124(4): 1296-1307
[10] LIMÓN-PACHECO J, GONSEBATT M E. The role of antioxidants and antioxidant-related enzymes in protective responses to environmentally induced oxidative stress[J]. Mutation ResearchGenetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 2009, 674(2): 137-147.
[11] 周先艳,樊建,唐远龙,庄永亮,孙丽平.罗非鱼皮胶原蛋白水解产物的体外抗氧化活性和体内抗衰老作用[J].食品科学,2016,37(15):221-226.
